米邦塔食用仙人掌的快速繁殖技术研究

以米邦塔食用仙人掌半成熟的茎片作外植体，消毒后以MS为基本培养基经初代培养后建立无菌材料进行继代培养．在Ms基本培养基中，添加不同浓度的6－BA和NAA，进行培养来探讨外界条件对侧芽组织的诱导情况．研究发现：以“MS＋BA4mg／L＋NAA0．5mg／L”作为增殖培养基能够获得理想的增殖效果，用1／2MS＋1IBAmg／L培养基进行生根诱导对组织的形成较为有利，可以缩短育苗时间．     

新青叶(Hygrophila polysperma)离体培养快速繁殖的研究

以新青叶的叶或长约5mm的茎为外植体,接种在BA为0．5、1．0、2．0mg/L,NAA为0．1、0．3mg/L的6种激素配比的MS培养基上。结果表明：茎和叶这两种外植体都能诱导愈伤组织发生和芽苗形成,而以BA1．0mg/L＋NAA0．1mg/L效果最好;生根壮苗采用BA0．0、0.5mg/L,NAA0．5、1．0、1．5mg/L的六种激素配比。结果显示,生根壮苗效果以NAA1．5mg/L或BA0．5mg/L＋NAA1．0mg/L效果较好。     

非洲菊F1的组织培养

以非洲菊南燕F1种子无菌萌发的种子苗作外植体,在含不同植物激素的培养基上进行丛生芽的诱导、芽的继代增殖、芽生根与移栽,以快速获得再生植株.结果表明:丛生芽诱导培养基以MS+BA 1.5 mg·L-1+IBA 0.2 mg·L-1较好,诱导系数达到7;增殖培养基以MS+BA 0.5 mg·L-1+NAA 0.1 mg·L-1较好,增殖系数高达10,且增殖芽生长好;生根培养基以1/2MS+IBA 0.2 mg·L-1最佳,生根率达100%,平均生根数量多,幼苗生长势旺.     

非洲菊的组培快繁技术研究

以非洲菊切花和盆花花托为外植体进行组织培养快繁 ,诱导培养基为 1/ 2MS BA 7.5mg·L- 1(单位下同 ) IAA 1.5和 1/ 2MS BA 6 IAA 1.0 ,继代增殖以MS 0 .5和MS BA 0 .5 PP3330 .2交替培养为宜 ,生根培养以 1/ 2MS NAA 0 .3效果最佳。同时 ,研究了降低生产成本等具体问题     

丽格海棠组织培养的研究

取丽格海棠（Begonia elatior）幼叶为外植体（Explant）,以MS为基本培养基,附加不同浓度比例的细胞分裂素6-BA和生长素NAA,接种培养。结果表明：诱导愈伤组织及芽分化的最佳培养基是MS＋6-BA2mg.L-1＋NAA0.2mg.L-1,诱导生根率最高的培养基是1/2MS＋NAA0.6mg.L-1。     

非洲菊新品种“朝霞”的组培快繁

目的：建立非洲菊新品种“朝霞”的组培快繁体系。方法：以非洲菊新品种“朝霞”花蕾为外植体,研究了不同激素水平对花蕾愈伤组织诱导及植株再生的影响。结论：结果表明,诱导愈伤和芽分化最佳培养基为Ms＋NAA0．2mg·L^-1＋6-BA2．5mg·L^-1和MS＋NAA0．1mg·L^-1＋6-BA5mg·L^-1,扩繁培养以MS＋NAA0．1mg·L^-1＋6-BA3mg·L^-1为宜。最佳生根培养基为1／2MS＋IBA0．1mg·L^-1。     

月季切花新品种快速繁殖的关键技术

通过对5个月季切花新品种的比较研究,筛选出适合不同品种快速繁殖的培养基.结果表明:各品种的启动培养以MS+BA0.5为宜;各品种适宜的增殖培养基是不同的,阿班斯适宜的增殖培养基为MS+BA 2.5 +NAA 0.02,金斯莱克为 MS+BA 3.0 +NAA 0.01,阿维兰为 MS+BA 3.0+NAA 0.02,红衣主教为 MS+BA 2.0 +NAA 0.02,萨蔓莎为 MS+BA 3.0+NAA 0.01;各品种适宜的生根培养基是1/2 MS+IBA 0.5;不同品种之间,同一品种的不同单芽之间的离体生长存在差异.     

矮牵牛茎段植株再生体系的建立

将矮牵牛Petunia hybrida Vilm的茎段接种在MS附加不同激素的培养基上进行愈伤组织诱导.结果表明:在MS+BA1.0 mol.L-1+NAA1.0 mol.L-1的培养基上可以形成愈伤组织,而且经过继代培养仍可形成愈伤组织;茎段或愈伤组织接种在MS+BA1.0 mol.L-1+NAA0.1 mol.L-1的培养基上可以形成不定芽,且诱导率达100%;健壮的高1.5~2.0 cm的不定芽接种在1/2MS+IBA0.5 mol.L-1+AC1.0 g.L-1的培养基上,其生长根状况良好,生根率达100%.     

芋艿茎尖诱导成苗成芋的组培技术研究

以芋艿茎尖为试材，研究培养基和不同光照条件对芋艿茎尖诱导成苗和试管苗的诱导成芋的影响。结果表明：茎尖诱导成苗的较理想培养基为：NS 3％蔗糖 6-BA5．0mg／L-1 NAA0．02mg／L-1(单位下同)；分化培养基为：NS 3％蔗糖 6-BA3．0 NAA1．0；诱导成芋培养基为：NS 8％蔗糖 6-BA1．0 NAAO．5；自然光培养比日光灯培养的试管苗明显偏高，粗壮，试管芋的块茎明显偏大，但分化苗的丛芽数较少。     

ARF基因导入烟草的遗传转化研究

以烟草无菌苗叶片为外植体,利用叶盘法,将含生长素应答基因(auxin response factor,ARF)的根癌农杆菌LBA4404携带双元质粒载体(pBin438)介导进行遗传转化.结果表明:诱导烟草叶片不定芽的最佳分化培养基为MS+0.8 mg.L-16-BA+0.05mg.L-1NAA,生根培养基为1/2MS+0.02 mg.L-1IBA+0.02 mg.L-1NAA,分化率、生根率分别为96.9%、96.7%;将预培养3 d的外植体与农杆菌菌液浸染3~5 min后,共培养2~3 d,然后转化到含Km75 mg.L-1的选择培养基上进行分化筛选,再转入Km为75 mg.L-1、100 mg.L-1的培养基上进行生根筛选,生根率为66.1%;与对照相比,转基因烟草在形态上发生了明显的改变,叶片颜色变深绿,叶片增厚,主叶脉变粗壮等.PCR扩增,获得40株阳性转基因苗,证明ARF基因已导入烟草中.     

适当浓度的调节剂和活性炭对粉蕉组培的影响

粉蕉组培中,以MS为基本培养基,附加6-BA 6mg/L,NAA 0.4mg/L的配比可获4倍的月增殖率,且瘤状芽率较低;生根培养基添加活性炭有效抑制褐变.     

三角紫叶酢浆草叶片外植体组织培养研究

以三角紫叶酢浆草(O xa lis triangu laris A.S t.H il)的叶片为材料进行组织培养研究,结果表明:叶片在适宜的培养基上可以形成愈伤组织,并分化成小苗。经筛选适宜诱导愈伤组织形成和芽分化的培养基为M S+6-BA 1.0m g/L+NAA 0.2m g/L+蔗糖30g/L+琼脂0.8%;丛生芽生长最佳培养基M S+6-BA 2.0m g/LNAA+0.3m g/L+蔗糖30g/L+琼脂0.8%;生根最佳培养基为1/2M S+NAA 0.2m g/L+蔗糖30g/L+琼脂0.8%。     

激素对大花蕙兰原球茎增殖与幼苗分化的影响

以大花蕙兰原球茎为研究材料,在MS培养基上添加不同浓度的激动素(KT)和萘乙酸(NAA),对原球茎(PLB)增殖与幼苗分化的影响.结果表明:低浓度KT(0.1 mg.L-1)原球茎增殖系数为3.2,幼苗分化率为12.2%;低浓度NAA(0.5 mg.L-1)原球茎增殖系数为2.7,幼苗分化率为11.1%.因此,大花蕙兰原球茎增殖和幼苗分化的最佳培养基组合是:MS KT(0.1mg.L-1) NAA(0.5 mg.L-1) AC(1.0 g.L-1).     

黑果枸杞组培繁殖培养基选择

以黑果枸杞种子为材料,通过配比不同质量浓度植物生长调节剂的方法,研究在其组织培养快速繁殖过程中培养基的选择.结果表明：MS培养基适合黑果枸杞种子萌发与生长;无菌苗在MS+1.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L IBA培养基中可以形成较好的愈伤组织;在MS+0.4 mg/L 6-BA+0.1 mg/L IBA培养基中不定芽数量较多;适宜生根的培养基为1/2 MS+1.5 mg/L IBA,生根率为98%.组培苗在泥炭土、蛭石、珍珠岩(2∶1∶1)混合基质中移栽成活率高达93%.     

洋桔梗叶盘高频率不定芽诱导的初步研究

采用正交设计法研究了细胞分裂素ZT,生长素NAA,培养基pH值和光照强度对洋桔梗叶盘不定芽诱导的影响.结果表明,实验的4个因子对洋桔梗叶盘不定芽都具有极显著的诱导作用,最佳培养基和培养条件为:MS ZT 0.5 mg/L NAA 0.01 mg/L,培养基pH值为6.3,光照强度为3000 lx.该处理中每叶盘再生不定芽数平均达9.41个.     

不同激素组合影响黄花蒿快速繁殖的初步研究

以黄花蒿嫩茎、叶为外植体,对其进行了以快速繁殖为目的的组织培养研究。结果表明：带腋芽的茎段在MS 6-BA1．0mg/L KT1．0mg/L的培养基上,不定芽诱导率较高。在MS 6-BA0．5mg/L 2,4D1．5mg/L的培养基上,茎和叶的愈伤组织诱导率最高；愈伤组织诱导不定芽以MS IAA0．2mg/L 6-BA2．0mg/L的培养基为好。     

蓝猪耳叶片高频率再生体系的建立

以蓝猪耳(Torenia fournieri Linden)叶片为外植体,研究多种因素对蓝猪耳不定芽诱导及不定根形成的影响,并进行了条件优化,建立了蓝猪耳叶片高频率离体再生体系.结果表明:芽诱导与基本培养基成分关系不大,而与植物生长物质的浓度和种类有关,其中以MS+6-BA 2 mg/L+NAA 0.2 mg/L状态最佳;不定根形成受到植物生长物质和培养基中离子浓度的共同影响,最佳生根条件为1/2 MS+IBA 0.2 mg/L.